DNA pull-down 以感兴趣的DNA序列为探针,寻找与该序列结合的蛋白质,最常见
的应用是寻找某特定基因启动子区域的转录因子。
三、实验流程
(一)探针准备
1、PCR扩增目的片段
表2 PCR反应条件
温度(℃)时间(s)循环数9810315557210表3 PCR反应体系
试剂使用量(μl)终浓度PrimeSTAR Max Premix(2X)25 μl1XPrimer F1μl0.2 μMPrimer R1μl0.2 μMTemplate10ng灭菌水Up to 50 μl全长基因片段的获取,纯化、回收(DNA回收试剂盒,天根:DP214-02 ) ,以全长片段为模板用sense-F/sense-R和AntiSense-F/AntiSense-R引物PCR扩增获
取正义链和反义链的目的基因,跑1.5%琼脂糖凝胶电泳检测,90V,30min。
2、胶回收
a. 柱平衡:向吸附柱CB2中(吸附柱放入收集管中)加入500µl平衡液BL,
12,000rpm离心1min,倒掉废液,将吸附柱重新放回收集管中。
b. 将单一的目的DNA条带从琼脂糖凝胶中切下,放入干净EP管中,称取重量。
c. 向胶块中加入等体积的溶液PC,50℃水浴放置10min左右,使胶块充分 溶解。
d. 将上一步所得溶液加入一个吸附柱CB2中,12,000rpm离心1min,倒掉废液,将吸附柱CB2放入收集管中。
e. 向吸附柱中加入600μl漂洗液PW,12,000rpm离心1min,倒掉废液,将吸附柱CB2放入收集管中。
f. 重复操作步骤
g. 将吸附柱CB2放入收集管中,12,000rpm离心2min,将吸附柱置于室温,放置3min。8、将吸附柱CB2放入一个新的离心管中,向吸附膜中间位置滴加30μl洗脱缓冲液EB,室温放置2min,12,000rpm离心1min,收集DNA溶液。
(二)DNA Pull down 实验
1、样本前处理
a. 收集10^7个细胞至 1.5 mL EP 管内,并用预冷 1×PBS洗涤两次;
b. 用100ul 1×PLB重悬细胞;(预先加入蛋白酶抑制剂)
c. 30%功率超声10次,超2秒,停3秒,时长2min;
d. 4℃翻转孵育30min裂解细胞;
e. 4℃,16000g离心10min;取上清;
2、链霉素亲和磁珠与生物素标记的DNA结合
f. 从4℃冰箱取出链霉亲和素磁珠,震荡混匀后分别取50ul到Probe组及Bead组EP管中;
g. 置于磁力架上静置2min,带磁珠完全吸附到管壁后,移除上清液;
h. 用500ul 2×B&W Buffer 重悬磁珠,置于磁力架上静置2min,带磁珠完全吸附到管壁后,移除上清液;
i. 重复h步骤一次;
j. 加入50ul2×B&W Buffer 重悬磁珠,并加入等体积生物素标记DNA 探针(50pmol);
k. 室温翻转孵育20min;
l. 置于磁力架上静置2min,带磁珠完全吸附到管壁后,移除上清液;
m. 用100ul预冷的TE buffer重悬磁珠,置于磁力架上静置2min,带磁珠完全吸附到管壁后,移除上清液;
n. 重复m步骤2次(共洗涤3次);
o. 用100ul预冷的BS/THES buffer重悬磁珠,置于磁力架上静置2min,带磁珠完全吸附到管壁后,移除上清液;
p. 重复o步骤1次
q. 用180ul预冷1×PBS重悬磁珠;
3、DNA-磁珠复合物与蛋白结合
a. 取10ul e步骤获得的蛋白液标记为input,并于-20℃冻存;
b. 分别取20ul e步骤获得的蛋白液到probe组与Bead组中,并加入2ul蛋白酶抑制剂;
c. 4℃翻转孵育30min;
d. 置于磁力架上静置2min,带磁珠完全吸附到管壁后,移除上清液;
e. 用200ul预冷的BS/THES buffer重悬磁珠,置于磁力架上静置2min,带磁珠完全吸附到管壁后,移除上清液;
f. 重复e步骤4遍(共计洗涤5遍)
g. 加入50ul洗脱液及15ul 5×loadingbuffer,沸水煮10min。
Pull down产物可直接用于后续WB验证或质谱检测;
四、技术优势✅ 高特异性
✅ 广泛适用性
✅ 高灵敏度
✅ 多维度分析
五、适用范围1️⃣ DNA Pull down_WB,用于检测目标DNA序列与某样本中的待测蛋白是否存在相互作用;
2️⃣ DNA Pull down_MS, 用于筛选目标DNA序列与某样本中的哪些蛋白具有相互作用。
六、代表性实验结果
(注:组织样品需液氮速冻、保存于-80度,样品使用干冰寄送)
如您希望进一步了解该实验的技术细节、数据展示或定制化服务,欢迎联系我们的科研服务团队!
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